Tutorials, Webinare und informative Videos über unsere optischen Sensorsysteme
Nicht-invasive Online-Kulturüberwachung in Multiwell-Platten
SDR SensorDish® Reader Basis-Set
Der SDR SensorDish® Reader ist ein kleiner 24-Kanal Reader zur nicht-invasiven Erfassung von Sauerstoff und pH in Multidish-Systemen (SensorDishes®). Diese enthalten einen Sensorspot am transparenten Boden jeder Well, die nicht-invasiv ausgelesen werden. SensorDishes® für Sauerstoff (OxoDish®) und pH (HydroDish®) sind im 24-Well und 6-Well Format erhältlich. 24-Deep Well Platten mit integriertem Sauerstoff- (OxoDish®-DW) und pH-Sensor (HydroDish®-DW) erlauben Messungen in geschüttelten Kulturen. Der SensorDish® Reader kann in Inkubatoren und Schüttlern eingesetzt werden und ist somit das ideale System für die Zell- und Bakterienkultivierung.
- Parallele Online-Überwachung in 24- oder 6-Well Einwegplatten
- Nicht-invasive und zerstörungsfreie Messung
- Deep Well Platten (24-Well Format) und Low-Well Platten erhältlich
- Vorkalibriert
- Zur Verwendung in Inkubatoren und Schüttlern
- Optionale Erweiterung für die Überwachung von bis zu 240 Proben
Anwendungsbereiche
Mehr Sicherheit bei hypoxischer Stammzellenkultivierung
Der Einfluss des Mediumwechsels auf gelösten Sauerstoff (DO) bei der Kultivierung humaner embryonaler Stammzellen (hESC) wurde bei verschiedenen Sauerstoffspannungen in der Inkubatoratmosphäre untersucht. Proben mit vollem Mediumswechsel unter Verwendung von nicht vorkalibriertem Medium zeigten einen DO-Anstieg von 20 bis 60 % Luftsättigung. Anders als erwartet, führte sogar eine halbe Mediumänderung mit vorinkubiertem Medium zu einer bemerkenswerten Sauerstofferhöhung von 10 - 30 % Luftsättigung. Der SensorDish® Reader kann in Hypoxie-Inkubatoren, aber auch in kleinen Hypoxiekammern, eingesetzt werden (siehe Bild).
Barbara Ley, Prof. Oliver Brüstle, Life & Brain GmbH, Bonn, Deutschland
Sauerstoff- und pH-Überwachung im Tissue Engineering
Humane Chondrozyten mit unterschiedlichen Startzellkonzentrationen wurden in OxoDishes® und HydroDishes® kultiviert. pH-Abweichungen von den Kontrollvertiefungen (nur Medium) konnten selbst für die niedrigste Startkonzentration nachgewiesen werden. Die Ansäuerungsraten entsprachen den verschiedenen Startkonzentrationen. Eine Änderung des Mediums nach 5 Tagen führte zu einem zeitlichen pH-Anstieg, bis die Proben wieder im Gleichgewicht mit der Inkubatoratmosphäre (5 % CO2) waren. Die Sauerstoffkinetik zeigt den jeweiligen Sauerstoffabfall.
Dr. Andreas Thomsen, CellGenix GmbH, Freiburg, Deutschland
SDR & OxoDishes® für die Stammkulturentwicklung
Während einer geschüttelten E. coli-Kultivierung wurde unter Verwendung einer Deep Well OxoDish® die Sauerstoffkinetik überwacht. Verschiedene Medienzusammensetzungen wurden getestet und mit einem Minimalmedium (MM) verglichen. Eine höhere Konzentration von Hefeextrakt (YE) führte zu schnellerem Wachstum. Die Zugabe von Glyzerin als zweites Substrat verlängerte die stationäre Phase. Ammoniumchlorid hatte keinen Einfluss auf den Stoffwechsel. Nachdem das / die Substrat(e) verbraucht waren, erhöhte sich der Sauerstoff aufgrund des Sauerstoffeintritts.
Olaf Christensen, Lonza Ltd., Visp, Schweiz
Echtzeit-Überwachung der Respiration von marinem Zooplankton
Der Sauerstoffverbrauch von 3 bis 4 Copepodenauplien pro Probe wurde über 6 Stunden in luftdichten Glasampullen überwacht. Den Nauplien wurde Phytoplankton in Umweltkonzentrationen angeboten. Gleichzeitig wurden die Fütterungs- und Fäkalienpelletproduktionsraten geschätzt. Die Respirationsraten waren linear und stabil, was zeigte, dass die Nauplien weder von den Gefäßwänden noch von Nahrungsrückständen beeinflusst wurden. Die Respirationsrate wurde mit Literaturwerten anderer Spezies verglichen. Der höhere Sauerstoffverbrauch der Nauplien war vermutlich auf eine konstante Fütterung zurückzuführen.
Dr. Marion Köster, Ernst-Moritz-Arndt-Universität Greifswald, Deutschland, Mar Ecol Prog Ser 353: 157-164 (2008)
Technische Daten
Spezifikationen | pH* | Sauerstoff | |
---|---|---|---|
* in physiologischen Lösungen bei 37 °C | |||
Messbereich | 6,0 - 8,5 pH | 0 - 50 % O2 | |
Auflösung* | ± 0,05 pH bei = 7 | ± 0,4 % O2 bei 20.9 % O2 | |
Präzision* | ± 0,2 pH bei pH = 7 (Sensorbatch Kalibrierung) ± 0,1 pH bei pH = 7 (Sensorspot Kalibrierung) | ± 1 % O2 bei 20.9 % O2 | |
Abweichung* | < 0,1 pH innerhalb einer Woche (Messintervall 10 Min.) | < 0,2 % O2 innerhalb einer Woche (Messintervall 10 Min.) | |
Messtemperaturbereich | von + 15 °C bis + 45 °C | ||
Ansprechzeit (t90) bei 25 °C | < 120 Sek. | < 30 Sek. | |
Eigenschaften | |||
Kompatibilität | Wässrige Lösung, Ethanol (max. 10 % v/v), Methanol (max. 10 % v/v), pH 2 - 10 | ||
Querempfindlichkeit | Reduziert auf Ionenstärke (Salzgehalt); hohe Konzentrationen von kleinen fluoreszierenden Molekülen im sichtbaren Bereich können stören | ||
Kalibrierung | Beta-bestrahlt, HydroDishes® und OxoDishes® sind vorkalibriert | ||
Gerät | SensorDish® Reader | Splitter | Netzteil |
Typ | SDR v3 oder höher | SP1.1 oder höher | Mascot 9920 |
Reinigung | Ethanol | ||
Input | 18 - 24 V DC 150 mA | 18 - 24 V DC 1,5 A | 100 - 240 V AC 50 - 60 Hz. max. 0,9 A |
Gewicht | 380 g | 240 g | |
Abmessungen | 16,3 cm x 8,9 cm x 2,2 cm | 12,4 cm x 8,0 cm x 4,5 cm |
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Weitere Informationen
Publikationen
FAQs
Bedienungsanleitungen
Broschüren
Software
SDR version v4.0.0 - Windows XP/Vista/7/8
USB Serial Driver - Windows XP/Vista
USB Serial Driver - Windows 7/8/8.1
Medien
Video: SDR SensorDish® Reader
Video: Clamp System for PreSens SDRs
Veröffentlichung: Cytotoxicity Determination
Veröffentlichung: Non-invasive Method for Monitoring Real-time Oxygen Concentrations during HSPC Culture
Veröffentlichung: Non-invasive Optical Dissolved Oxygen Quantification in Small-scale Bioreactors
Veröffentlichung: Non-invasive Oxygen and pH Sensors
Veröffentlichung: Ready-to-use Devices for Omptimizing Bioprocesses with Integrated Sensors
Veröffentlichung: Quality Assessment in 3D Cultures of Disc-Chondrocytes
Veröffentlichung: Single-use Containers Demand Single-use Sensors
Veröffentlichung: Process Monitoring in Suspension Adapted CHO Cell Culture